小鼠牙髓干细胞

小鼠原代细胞

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XM-X06015×10^5小鼠原代细胞4510


一、细胞基本属性

细胞名称:小鼠牙髓干细胞(Mouse Dental Pulp Stem Cells)

细胞别称:mDPSC;牙髓间充质干细胞;牙髓祖细胞

种属来源:小鼠(Mus musculus)

年龄性别:健康成年小鼠(性别不限,供体筛选无口腔疾病史)

组织来源:牙髓组织(第三磨牙或切牙牙髓腔)

生长特性:贴壁生长(依赖胶原蛋白包被培养器皿)

细胞形态:长梭形或多角形,增殖期呈旋涡状排列

细胞代数:P3 - P10(保持干细胞特性与分化潜能)

细胞规格:5×10^5 cells/T25培养瓶或1mL冻存管(含无血清冻存液)

培养基:α - MEM基础培养基(含10% FBS+1%双抗+成纤维生长因子)

培养条件:气相:5% CO₂;温度:37℃;湿度:95%

冻存条件:无血清冻存液(含DMSO及细胞保护剂),-150℃液氮长期保存

倍增时间:约36 - 48小时(受细胞密度及生长因子影响)

供应限制:仅供科学研究,不可用于临床治疗或人体实验


二、细胞培养操作指南

收货处理:

 - 冻存管需在37℃水浴快速解冻,离心后重悬于预热培养基

 - 培养瓶经酒精消毒后静置于培养箱1小时适应环境

传代标准:细胞融合度达80% - 90%(建议每2 - 3天传代一次)

传代比例:1:2至1:3(推荐初始接种密度3×10³ cells/cm²)

消化方法:

 - 使用0.25% Trypsin - EDTA溶液(含0.02% EDTA)

 - 37℃消化3 - 5分钟,镜下观察细胞边缘卷曲后终止消化

注意事项:

 - 避免消化过度(影响细胞膜完整性及表面标志物)

 - 传代后12小时内避免频繁移动培养瓶以确保贴壁


三、细胞冻存操作规范

冻存液配方:无血清冻存液(含10% DMSO及胎牛血清替代物)

细胞密度:冻存浓度5×10⁵ - 1×10⁶ cells/mL

冻存步骤:

 - 离心收集细胞,轻柔重悬于预冷冻存液

 - 程序降温:4℃ 30分钟 → -80℃过夜 → 转入液氮长期保存

复苏验证:

 - 复苏后48小时内检测细胞活性(台盼蓝染色存活率≥90%)

 - 功能验证:成骨/成脂诱导分化实验(P5代细胞需保持多向分化潜能)


四、售后服务承诺

重发标准:

1. 运输过程中液氮罐泄露或温度异常(需提供物流凭证)

2. 到货72小时内经检测证实微生物污染(需提供污染检测结果)

3. 细胞复苏后活性低于85%(需提供台盼蓝染色图像)

4. 表面标志物CD90/CD105阳性率未达标准(流式检测报告)

不予重发情形:

1. 未按规范进行预包被直接接种导致贴壁失败

2. 使用含高浓度血清(>15%)培养基引发分化异常

3. 未定期检测支原体造成后续实验污染

4. 细胞传代超过P10代后功能衰退


(注:以上内容均基于标准操作流程,实际应用需结合具体实验条件优化参数。)